2025-12-17
Questo esperimento si riferisce a "GB 31658.22-2022 Standard nazionale per la sicurezza alimentare — Determinazione dei residui di β-agonisti negli alimenti di origine animale mediante cromatografia liquida-spettrometria di massa tandem" e utilizza il sistema di cromatografia liquida-spettrometria di massa tandem Wayeal LCMS-TQ9200 per determinare il contenuto di β-agonisti nella carne di maiale. I risultati sperimentali indicano che il test di idoneità del sistema ha dimostrato picchi ben definiti e una buona linearità, soddisfacendo i requisiti sperimentali. La ripetibilità del tempo di ritenzione per la soluzione standard di lavoro degli β-agonisti era inferiore all'1% e la ripetibilità dell'area del picco era inferiore al 3%, indicando una buona ripetibilità. Per la soluzione di test di sensibilità degli β-agonisti, i rapporti segnale-rumore dei picchi principali a concentrazioni di 0,2 ng/mL e 0,5 ng/mL erano significativamente superiori a 3 e 10, rispettivamente, soddisfacendo i requisiti sperimentali.
Non sono stati rilevati β-agonisti nel test del campione di carne di maiale. Tutti i dati sopra riportati soddisfano i requisiti dello strumento specificati dal metodo standard.
Parole chiave:Cromatografia liquida-spettrometria di massa tandem; β-agonisti; Clenbuterolo; Sicurezza alimentare.
1. Strumenti e reagenti
1.1 Elenco di configurazione LCMS
Tabella 1 Elenco di configurazione dello strumento
| N. | Modulare | Quantità |
| 1 | LCMS-TQ9200 | 1 |
| 2 | Pompa costante ad alta pressione binaria P3600B | 1 |
| 3 | Forno per colonne CT3600 | 1 |
| 4 | Campionatore automatico AS3600 | 1 |
| 5 | Stazione di lavoro cromatografica SmartLab CDS 2.0 | 1 |
1.2 Reagenti e standard
Tabella 2 Elenco dei reagenti e degli standard
| N. | Reagente/Standard | Purezza |
| 1 | Metanolo | Grado LC-MS |
| 2 | Etanolo | Grado LC-MS |
| 3 | Acido formico | Grado LC-MS |
| 4 | Acetato di ammonio | Grado analitico |
| 5 | β-Glucuronidasi/Arilsulfatasi | 30 U/60 U/mL |
| 6 | Acido perclorico | 70% |
| 7 | Acetato di etile | Grado analitico |
| 8 | Metil etere terz-butilico | Grado analitico |
| 9 | Soluzione di ammoniaca | Grado analitico |
| 10 | Standard di clenbuterolo | 98% |
| 11 | Standard di clenbuterolo-D9 | 98% |
| 12 | Standard di ractopamina | 98% |
| 13 | Standard di ractopamina-D6 | 98% |
| 14 | Standard di cimaterolo | 98% |
| 15 | Standard di salbutamolo | 98% |
| 16 | Standard di salbutamolo-D3 | 98% |
| 17 | Standard di terbutalina | 98% |
| 18 | Standard di terbutalina-D9 | 98% |
| 19 | Standard di tulobuterolo | 98% |
| 20 | Standard di cimbuterolo |
98% |
1.3 Materiale sperimentale e attrezzature ausiliarie
Pulitore a ultrasuoni
Miscelatore a vortice
Agitatore a temperatura costante a bagno termostatico
Centrifuga ad alta velocità
2. Metodo sperimentale
2.1 Pretrattamento del campione
2.1.1 Idrolisi enzimatica ed estrazione
Pesare 2 g del campione (con precisione di ±0,05 g) in una provetta da centrifuga da 50 mL. Aggiungere 6 mL di soluzione tampone di acetato di ammonio 0,2 mol/L e 40μL di β-glucuronidasi/arilsulfatasi. Miscelare accuratamente con un vortice e incubare a 37°C al buio con agitazione in un bagno termostatico per 16 ore. Lasciare raffreddare a temperatura ambiente per l'uso successivo.
2.1.2 Estrazione, purificazione e concentrazione
Prelevare la soluzione preparata, aggiungere 100μL della soluzione di lavoro dello standard interno a 100 ng/mL, miscelare accuratamente con un vortice e centrifugare a 8000 giri/min per 8 minuti. Raccogliere il surnatante, aggiungere 5 mL di soluzione di acido perclorico 0,1 mol/L, miscelare con un vortice e regolare il pH a 1,0 ± 0,2 utilizzando acido perclorico. Dopo la centrifugazione a 8000 giri/min per 8 minuti, regolare il pH del surnatante a 10 ± 0,5 utilizzando una soluzione di idrossido di sodio 10 mol/L. Aggiungere 15 mL di acetato di etile, agitare a velocità media per 5 minuti e centrifugare a 5000 giri/min per 5 minuti. Raccogliere lo strato organico superiore. Allo strato acquoso rimanente, aggiungere 10 mL di metil etere terz-butilico, agitare a velocità media per 5 minuti, centrifugare a 5000 giri/min per 5 minuti e raccogliere lo strato organico superiore. Combinare tutti gli strati organici ed evaporare a secco sotto un flusso di azoto a 50°C. Sciogliere il residuo in 5 mL di soluzione di acido formico al 2% e mettere da parte. Preparare una colonna di estrazione in fase solida a scambio cationico a modalità mista attivandola sequenzialmente con 3 mL di metanolo e 3 mL di acido formico al 2%. Caricare la soluzione preparata sulla colonna, risciacquare sequenzialmente con 3 mL di acido formico al 2% e 3 mL di metanolo e asciugare sotto vuoto. Eluire la colonna con 3 mL di soluzione di metanolo ammoniacale al 5%. Evaporare l'eluato a secco sotto un flusso di azoto a 50°C. Ridissolvere il residuo in 0,5 mL di soluzione di metanolo–acido formico allo 0,1% (10:90, v/v), miscelare accuratamente e filtrare attraverso una membrana microporosa da 0,22μm per l'analisi mediante cromatografia liquida-spettrometria di massa tandem.
2.2 Condizioni sperimentali
2.2.1 Condizioni cromatografiche liquide
Colonna cromatografica” C18, 1,8μm 2,1*100mm
Fase mobile: A: Acido formico allo 0,1% in acqua; B: Metanolo
Portata: 0,3 mL/min
Temperatura della colonna: 40°C
Volume di iniezione: 3μL
3. Test di idoneità del sistema
Il test di idoneità del sistema mostra che i picchi target sono ben definiti senza interferenze da altri picchi di impurità, soddisfacendo i requisiti sperimentali.
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Fig. 1 Cromatogramma del test dei sette β-agonisti (1 ng/mL)
3.2 Intervallo lineare
Prendendo soluzioni standard di β-agonisti e utilizzando soluzioni di lavoro a concentrazione intermedia, è stata preparata una curva standard a gradini. L'intervallo lineare per i sette β-agonisti era 0,5–50 ng/mL, con R² > 0,99, indicando una buona relazione lineare.
Tabella 3 Tabella degli intervalli lineari per gli β-agonisti
| Composto | Intervallo lineare | Equazione di regressione | Coefficiente di correlazione lineare (R²) |
| Clenbuterolo | 0,5-50 ng/mL | y=0,121x-0,1024 | 0,9973 |
| Ractopamina | 0,5-50 ng/mL | y=0,7188x-0,3324 | 0,9982 |
| Cimaterolo | 0,5-50 ng/mL | y=0,2186x-0,1270 | 0,9960 |
| Salbutamolo | 0,5-50 ng/mL | y=0,0913x-0,0644 | 0,9973 |
| Terbutalina | 0,5-50 ng/mL | y=0,2788x-0,1353 | 0,9972 |
| Tulobuterolo | 0,5-50 ng/mL | y=0,2699x-0,1041 | 0,9988 |
| Cimbuterolo | 0,5-50 ng/mL | y=0,1025x-0,0255 | 0,9990 |
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Fig. 2 Cromatogramma della curva standard dei sette β-agonisti
3.3 Limite di rilevamento (LOD) e limite di quantificazione (LOQ)
In questo metodo, il limite di rilevamento (LOD) e il limite di quantificazione (LOQ) per gli β-agonisti sono impostati rispettivamente a 0,2 ng/mL e 0,5 ng/mL. Per ogni composto in questo metodo, il rapporto segnale-rumore alle concentrazioni specificate per LOD e LOQ è superiore a 3 e 10, rispettivamente, soddisfacendo i requisiti di sensibilità sperimentale.
Tabella 4 Rapporti segnale-rumore corrispondenti per LOD e LOQ di ciascun composto
| Composto | Rapporto segnale-rumore (S/N) | |
| LOD | LOQ | |
| Clenbuterolo | 19,65 | 67,23 |
| Ractopamina | 61,88 | 114,61 |
| Cimaterolo | 16,34 | 61,02 |
| Salbutamolo | 34,22 | 90,29 |
| Terbutalina | 44,58 | 110,99 |
| Tulobuterolo | 20,07 | 68,48 |
| Cimbuterolo | 4,80 | 14,67 |
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Fig. 3 Cromatogrammi ionici dei sette β-agonisti alla concentrazione LOD e LOQ
3.4 Test di precisione
È stata prelevata una soluzione mista di sostanze standard di β-agonisti a concentrazioni basse, medie e alte e iniettata consecutivamente sei volte per confrontare le deviazioni del tempo di ritenzione e dell'area del picco. I risultati sono mostrati nella tabella sottostante. Tutti gli β-agonisti hanno mostrato deviazioni del tempo di ritenzione inferiori all'1% e deviazioni dell'area del picco inferiori al 3%, soddisfacendo i requisiti sperimentali.
Tabella 5 Test di precisione per ciascun composto
|
Composto |
Concentrazione (ng/mL) |
RSD del tempo di ritenzione (% , n=6) |
RSD dell'area del picco (% , n=6) |
|---|---|---|---|
| Clenbuterolo | 1 | 0,16 | 2,40 |
| 5 | 0,13 | 1,78 | |
| 20 | 0,00 | 2,32 | |
| Ractopamina | 1 | 0,21 | 2,14 |
| 5 | 0,15 | 2,72 | |
| 20 | 0,21 | 1,69 | |
| Cimaterolo | 1 | 0,20 | 1,92 |
| 5 | 0,11 | 2,55 | |
| 20 | 0,14 | 2,41 | |
| Salbutamolo | 1 | 0,17 | 1,37 |
| 5 | 0,23 | 1,66 | |
| 20 | 0,35 | 2,44 | |
| Terbutalina | 1 | 0,36 | 2,52 |
| 5 | 0,23 | 2,64 | |
| 20 | 0,36 | 1,36 | |
| Tulobuterolo | 1 | 0,13 | 1,19 |
| 5 | 0,10 | 1,69 | |
| 20 | 0,10 | 1,70 | |
| Cimbuterolo | 1 | 0,35 | 1,28 |
| 5 | 0,39 | 2,62 | |
| 20 | 0,38 | 1,65 |
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Fig. 4 Cromatogrammi dei test di precisione dei sette β-agonisti (6 iniezioni)
3.5 Test del campione
I campioni di carne di maiale acquistati sul mercato sono stati testati secondo il metodo di pretrattamento menzionato e non sono stati rilevati β-agonisti. Non sono stati osservati picchi cromatografici ai tempi di ritenzione corrispondenti ai sette β-agonisti, mentre gli altri picchi rappresentano i segnali della matrice dopo l'idrolisi enzimatica.
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Fig. 5 Cromatogramma del test del campione di carne di maiale
4. Conclusione
Questo metodo utilizza il sistema di cromatografia liquida-spettrometria di massa tandem Wayeal LCMS-TQ9200 per la determinazione degli β-agonisti nella carne di maiale. I dati dimostrano che tutti i picchi cromatografici mostrano una buona forma senza coda, la sensibilità soddisfa i requisiti sperimentali, i coefficienti di correlazione lineare superano 0,99 e la precisione è soddisfacente con deviazioni del tempo di ritenzione inferiori all'1% e deviazioni dell'area del picco entro il 3% per sei iniezioni consecutive di ciascun composto. Non sono stati rilevati β-agonisti nei test del campione di carne di maiale. Questi risultati indicano che il metodo, dotato del sistema Wayeal LC-MS/MS, soddisfa i requisiti di rilevamento qualitativo e quantitativo di routine per gli analiti target.
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